資料簡介
羅氏實(shí)時熒光定量PCR儀工作原理詳解
一、引言
聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Polymerase Chain Reaction,PCR)自上世紀(jì)80年代問世以來,極大地推動了分子生物學(xué)、醫(yī)學(xué)檢測、環(huán)境監(jiān)測、法醫(yī)學(xué)和食品安全等多個領(lǐng)域的發(fā)展。傳統(tǒng)PCR的終點(diǎn)分析具有一定的局限性,僅能判斷是否擴(kuò)增成功,難以實(shí)現(xiàn)實(shí)時監(jiān)控與定量分析。實(shí)時熒光定量PCR(Real-time Quantitative PCR,qPCR)技術(shù)應(yīng)運(yùn)而生,解決了這一問題。
羅氏公司研發(fā)的 LightCycler® 系列實(shí)時熒光定量PCR儀,基于實(shí)時熒光檢測與熱循環(huán)技術(shù),集成了溫控系統(tǒng)、光學(xué)檢測模塊及數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)。本文將系統(tǒng)介紹其工作原理、技術(shù)結(jié)構(gòu)及相關(guān)參數(shù),為理解儀器操作原理和合理使用提供理論依據(jù)。
二、實(shí)時熒光定量PCR的基本原理
實(shí)時熒光定量PCR儀的核心在于實(shí)時監(jiān)測DNA擴(kuò)增過程中熒光信號的變化,通過熒光染料或探針報告擴(kuò)增產(chǎn)物的累積量,最終實(shí)現(xiàn)對初始模板的定量分析。
其基本過程包括:
模板擴(kuò)增(DNA復(fù)制)
熒光信號產(chǎn)生(通過染料或探針)
信號采集與分析(每一循環(huán)實(shí)時讀取)
1. 擴(kuò)增原理
PCR擴(kuò)增由三個基本步驟循環(huán)構(gòu)成:
變性(Denaturation):95°C,使雙鏈DNA解鏈為單鏈;
退火(Annealing):50–65°C,引物與模板DNA特異性結(jié)合;
延伸(Extension):72°C,在Taq酶作用下合成新鏈。
每一輪擴(kuò)增,理論上目標(biāo)序列數(shù)量會倍增,經(jīng)過30–40個循環(huán)后即可達(dá)到可檢測水平。
2. 熒光標(biāo)記方法
熒光定量PCR的實(shí)現(xiàn)依賴于熒光染料或探針系統(tǒng)的加入。目前主要采用以下幾種檢測體系:
SYBR Green I染料:與雙鏈DNA結(jié)合后發(fā)出熒光,適用于通用引物體系;
TaqMan探針:結(jié)合目標(biāo)序列后被酶切斷產(chǎn)生熒光釋放,特異性強(qiáng);
分子信標(biāo)(Molecular Beacon)與Scorpion探針:通過構(gòu)象變化實(shí)現(xiàn)熒光釋放;
FRET探針:兩個探針之間發(fā)生熒光共振能量轉(zhuǎn)移,用于高特異性檢測。
3. 熒光檢測與Ct值概念
每一輪循環(huán)結(jié)束后,設(shè)備通過激發(fā)光照射樣品,記錄熒光強(qiáng)度變化。熒光值超過設(shè)定閾值的循環(huán)數(shù)被稱為Ct(Threshold Cycle),其與起始模板數(shù)量呈負(fù)相關(guān)關(guān)系:
初始模板越多,Ct值越小;
Ct值差異可反映樣品間表達(dá)量差異。
通過繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線或采用ΔΔCt法,可進(jìn)行絕對或相對定量分析。
三、羅氏LightCycler® 系統(tǒng)構(gòu)造與功能模塊
羅氏 LightCycler® 實(shí)時熒光定量PCR儀由以下四大模塊構(gòu)成:
1. 溫控系統(tǒng)
構(gòu)造
使用帕爾貼元件進(jìn)行快速加熱與降溫;
96孔金屬模塊與熱蓋形成封閉反應(yīng)環(huán)境;
多點(diǎn)溫度傳感器進(jìn)行實(shí)時監(jiān)控與調(diào)節(jié)。
功能
確保每一孔溫度一致;
準(zhǔn)確執(zhí)行復(fù)雜的熱循環(huán)程序;
快速升降溫縮短實(shí)驗(yàn)時間,提高效率。
2. 光學(xué)檢測系統(tǒng)
光源
多通道激發(fā)光源(如LED)激發(fā)不同熒光染料;
激發(fā)波長穩(wěn)定,能量可控。
檢測器
采用光電二極管或光電倍增管;
不同波段濾光片組合可實(shí)現(xiàn)FAM、HEX、ROX、Cy5等染料識別。
工作流程
在每一循環(huán)結(jié)束后,系統(tǒng)進(jìn)行熒光激發(fā);
熒光信號通過光路系統(tǒng)傳輸至探測器;
同步讀取多個通道信號,支持多重檢測。
3. 樣品托盤與反應(yīng)板
采用標(biāo)準(zhǔn)96孔PCR板,方便兼容市場主流耗材;
熱蓋自動調(diào)節(jié)壓力,防止蒸發(fā);
金屬材質(zhì)確保良好的熱傳導(dǎo)性。
4. 控制與分析系統(tǒng)
通過USB或網(wǎng)絡(luò)接口連接控制計(jì)算機(jī);
使用 LightCycler® 軟件進(jìn)行程序設(shè)置、數(shù)據(jù)采集與圖像分析;
支持實(shí)時曲線、熔解曲線、標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制等功能。
四、典型檢測流程解析
1. 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
選擇適合的熒光系統(tǒng)(染料或探針);
設(shè)計(jì)特異性引物;
準(zhǔn)備PCR反應(yīng)體系(包含模板、引物、酶、dNTP等);
2. 程序設(shè)置
在軟件中設(shè)定熱循環(huán)程序,包括:
預(yù)變性時間與溫度;
每步溫度、時間、循環(huán)次數(shù);
采集熒光的通道與時間點(diǎn)。
3. 擴(kuò)增及實(shí)時檢測
啟動反應(yīng),儀器自動執(zhí)行升降溫與熒光采集;
實(shí)時生成擴(kuò)增曲線,觀察反應(yīng)動態(tài);
監(jiān)測不同通道間數(shù)據(jù)變化,判斷是否為特異性擴(kuò)增。
4. 數(shù)據(jù)分析
提取Ct值;
應(yīng)用ΔCt或ΔΔCt法計(jì)算表達(dá)量變化;
生成標(biāo)準(zhǔn)曲線用于絕對定量;
判斷熔解曲線是否存在非特異產(chǎn)物或引物二聚體。
五、熔解曲線分析原理(適用于SYBR Green法)
在擴(kuò)增結(jié)束后,通過升溫過程記錄雙鏈DNA解鏈產(chǎn)生的熒光下降,得到熔解曲線:
每一個特異產(chǎn)物對應(yīng)一個特定的熔解溫度(Tm);
若存在多個Tm峰,提示可能存在非特異擴(kuò)增或引物二聚體;
可通過曲線平滑、導(dǎo)數(shù)計(jì)算等方式進(jìn)行圖像識別。
六、影響熒光信號準(zhǔn)確性的因素
因素 | 影響表現(xiàn) | 建議解決方法 |
---|---|---|
熒光染料濃度 | 過高造成背景信號增加 | 優(yōu)化反應(yīng)濃度 |
引物二聚體 | 假陽性Ct值 | 設(shè)計(jì)引物時避免互補(bǔ)區(qū) |
光學(xué)污染 | 信號不穩(wěn)定或偏差大 | 定期清潔檢測窗口 |
溫控偏差 | 擴(kuò)增效率不均 | 定期校準(zhǔn)溫控模塊 |
七、工作原理的應(yīng)用示例
1. 基因表達(dá)分析
利用qPCR檢測轉(zhuǎn)錄本豐度,常用于疾病機(jī)制研究、藥效評估、轉(zhuǎn)基因檢測等。
2. 病原體檢測
檢測病毒DNA/RNA(如SARS-CoV-2、HPV、HBV等),適用于臨床診斷和大規(guī)模篩查。
3. 拷貝數(shù)變異(CNV)分析
通過對比Ct值計(jì)算基因組中某一區(qū)域的拷貝數(shù)變化,用于腫瘤研究或遺傳病篩查。
八、未來技術(shù)趨勢
雖然實(shí)時熒光PCR已趨成熟,但其工作原理不斷被擴(kuò)展與優(yōu)化,主要方向包括:
數(shù)字PCR(dPCR):基于微液滴分隔的絕對定量技術(shù);
微流控PCR芯片:小型化平臺適用于現(xiàn)場快速檢測;
自動化平臺整合:與樣品前處理、數(shù)據(jù)云分析系統(tǒng)協(xié)同工作。
九、結(jié)語
羅氏實(shí)時熒光定量PCR儀通過整合精確的溫控技術(shù)與多通道光學(xué)檢測系統(tǒng),實(shí)現(xiàn)了對DNA擴(kuò)增過程的實(shí)時監(jiān)控與定量分析。其工作原理遵循分子生物學(xué)與物理光學(xué)的基本規(guī)律,構(gòu)建出一個高效的數(shù)據(jù)生成平臺。在掌握其原理基礎(chǔ)上,科研人員可更加準(zhǔn)確地設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)、評估數(shù)據(jù)質(zhì)量,并進(jìn)一步拓展其在各類分子分析中的應(yīng)用潛力。
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