一、硬件校準(zhǔn)：確保計(jì)數(shù)板物理參數(shù)達(dá)標(biāo)

1. 腔室厚度檢測

• 工具：使用高精度千分尺（精度≤1μm）測量計(jì)數(shù)板的腔室高度（標(biāo)準(zhǔn)值通常為 0.1mm）。

• 標(biāo)準(zhǔn)：實(shí)測值與標(biāo)稱值的偏差需≤±2%（即 0.098~0.102mm），否則可能導(dǎo)致細(xì)胞分布不均或體積計(jì)算誤差。

2. 網(wǎng)格刻度準(zhǔn)確性

• 工具：通過顯微鏡配合目鏡測微尺，校準(zhǔn)計(jì)數(shù)板網(wǎng)格的邊長（如標(biāo)準(zhǔn)計(jì)數(shù)區(qū)邊長為 1mm）。

• 標(biāo)準(zhǔn)：刻度誤差需≤±1%，避免因面積計(jì)算錯(cuò)誤導(dǎo)致細(xì)胞濃度偏差。

3. 材質(zhì)與加工工藝

• 檢查計(jì)數(shù)板表面是否平整、無劃痕或氣泡，邊緣是否光滑（避免液體殘留或飛濺）。

• 一次性塑料計(jì)數(shù)板需確認(rèn)無菌包裝完整，避免污染干擾計(jì)數(shù)結(jié)果。

二、操作規(guī)范驗(yàn)證：排除人為誤差

1. 細(xì)胞懸液制備

• 均質(zhì)性檢測：通過渦旋振蕩或吸管吹打使細(xì)胞均勻分散，取樣前需充分混勻，避免細(xì)胞沉淀導(dǎo)致取樣偏差。

• 適宜濃度范圍：計(jì)數(shù)時(shí)細(xì)胞密度建議控制在 1×10?~1×10? cells/mL（濃度過高需稀釋，過低需離心富集），否則可能因細(xì)胞重疊或隨機(jī)誤差增大影響準(zhǔn)確性。

2. 加樣操作標(biāo)準(zhǔn)化

• 使用微量移液器（量程匹配，如 10~100μL）沿計(jì)數(shù)板邊緣緩慢滴加，確保液體通過毛細(xì)作用完覆蓋計(jì)數(shù)區(qū)，無氣泡或液滴溢出。

• 加樣后靜置 1~2 分鐘，待細(xì)胞沉降至腔室底部再進(jìn)行觀察（避免懸浮細(xì)胞計(jì)數(shù)偏差）。

三、結(jié)果比對：多方法交叉驗(yàn)證

1. 與血球計(jì)數(shù)板 / 自動細(xì)胞計(jì)數(shù)儀對比

• 同一細(xì)胞懸液分別用CHT4-SD100-002 計(jì)數(shù)板和血球計(jì)數(shù)板（傳統(tǒng)手動方法）或自動細(xì)胞計(jì)數(shù)儀（如 Cellometer、Vi-CELL）進(jìn)行計(jì)數(shù)。

• 可接受誤差：兩者結(jié)果的相對偏差需≤10%（如手動計(jì)數(shù)為 5×10? cells/mL，自動計(jì)數(shù)應(yīng)為 4.5×10?~5.5×10? cells/mL），否則需排查操作或硬件問題。

2. 臺盼藍(lán)染色輔助驗(yàn)證活細(xì)胞計(jì)數(shù)

• 對于貼壁細(xì)胞或需區(qū)分死活的樣本，可結(jié)合臺盼藍(lán)染色（活細(xì)胞拒染，死細(xì)胞染成藍(lán)色），通過計(jì)數(shù)板同時(shí)檢測總細(xì)胞數(shù)和活細(xì)胞數(shù)。

• 驗(yàn)證重點(diǎn)：活細(xì)胞比例與預(yù)期是否一致（如已知細(xì)胞存活率 > 90%，計(jì)數(shù)結(jié)果應(yīng)吻合）。

四、質(zhì)量控制：建立長期驗(yàn)證流程

1. 批次間差異檢測

• 新批次計(jì)數(shù)板使用前，隨機(jī)抽取 3~5 片進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn)，對比舊批次結(jié)果，確認(rèn)無顯著差異（如偏差 > 15% 需聯(lián)系供應(yīng)商）。

2. 定期空白對照

• 用無菌 PBS 或培養(yǎng)基代替細(xì)胞懸液進(jìn)行計(jì)數(shù)，確認(rèn)計(jì)數(shù)板無背景雜質(zhì)或熒光干擾（適用于熒光計(jì)數(shù)場景）。

3. 人員操作考核

• 對實(shí)驗(yàn)室新手進(jìn)行計(jì)數(shù)板操作培訓(xùn)，通過 “盲樣考核”（已知濃度的標(biāo)準(zhǔn)品）驗(yàn)證其操作準(zhǔn)確性，合格后方可獨(dú)立使用。

五、常見誤差來源與解決方案

總結(jié)