Annexin V-AbFluor™ 488 細胞凋亡檢測試劑盒主要包括 Annexin V-AbFluor™ 488、碘化丙啶(PI)、Annexin V 結(jié)合緩沖液(5×)等成分。不同規(guī)格試劑盒各成分的量有所不同,如 20T 規(guī)格的試劑盒包含 2mL 的 Annexin V 結(jié)合緩沖液(5×)、100μL 的 Annexin V-AbFluor™ 488 和 40μL 的 PI 等。該試劑盒需在 -20°C 避光保存,有效期 12 個月。
通過所需方法誘導細胞凋亡,同時培養(yǎng)無誘導的對照培養(yǎng)物。對于懸浮細胞,4℃、300g 離心 5min 收集 1-2×10?細胞,用冰預冷的 PBS 洗滌兩次。貼壁細胞需先用不含 EDTA 的胰酶消化,再離心收集細胞,同樣用 PBS 洗滌兩次。消化時間過長可能會破壞細胞膜結(jié)構(gòu),從而出現(xiàn)細胞壞死的假陽性。
用 100μL 1×Annexin V 結(jié)合緩沖液重懸細胞,每 100μL 細胞懸液中加入 5μL Annexin V-AbFluor™ 488 和 2μL PI,輕輕混勻。室溫避光孵育 15min,孵育結(jié)束后置于冰上。孵育過程中可輕輕顛倒數(shù)次以加強染色效果。
流式細胞儀檢測 :孵育結(jié)束后加入 400μL 1×Annexin V 結(jié)合緩沖液,輕柔混勻后置于冰上。染色后 30min 內(nèi)通過流式細胞儀分析細胞。Annexin V-AbFluor™ 488 的激發(fā)波長為 491nm,發(fā)射波長為 517nm;PI 的激發(fā)波長為 535nm,發(fā)射波長為 617nm。在流式細胞儀的散點圖上,左下象限(Annexin V?/PI?)代表活細胞;右下象限(Annexin V?/PI?)代表早期凋亡細胞;右上象限(Annexin V?/PI?)代表凋亡晚期細胞和壞死細胞。
熒光顯微鏡檢測 :對于懸浮細胞,按照上述流式細胞儀檢測的步驟操作后,將細胞懸浮置于玻片上,用蓋玻片蓋住細胞,盡快使用適當濾鏡通過熒光顯微鏡分析細胞。對于貼壁細胞,細胞接種于爬片或腔室載玻片上,誘導凋亡后,除去培養(yǎng)基,用 PBS 洗滌細胞兩次,準備工作液,每 100μL 1×Annexin V 結(jié)合緩沖液添加 5μL Annexin V-AbFluor™ 488 和 2μL PI,輕柔混勻后作用于細胞,室溫避光孵育 15-30min,用 1×Annexin V 結(jié)合緩沖液洗滌細胞兩次,載玻片上添加一滴 1×Annexin V 結(jié)合緩沖液,將細胞爬片置于載玻片上,對于細胞腔室載玻片上的細胞,添加足夠 1×Annexin V 結(jié)合緩沖液覆蓋細胞,也可使用抗熒光淬滅封片劑封片,然后使用適當濾鏡在熒光顯微鏡下觀察。
Annexin V-AbFluor™ 488 和 PI 使用前需平衡到室溫,且未使用的試劑分裝后在 -20°C 下保存,避光,避免反復凍融。
Annexin V 結(jié)合緩沖液使用前需用去離子水稀釋至 1×,剩余試劑可在 4°C 下保存 6 個月。
染色后的細胞需在 30min 內(nèi)進行檢測,以免影響檢測結(jié)果。
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