活/死細(xì)胞雙染色試劑盒主要包含兩種關(guān)鍵熒光染料:用于標(biāo)記活細(xì)胞的綠色熒光染料和用于標(biāo)記死細(xì)胞的紅色熒光染料。這兩種染料具有不同的化學(xué)特性和作用機(jī)制,能夠分別與活細(xì)胞和死細(xì)胞中的特定成分結(jié)合,從而實(shí)現(xiàn)對(duì)細(xì)胞生死狀態(tài)的區(qū)分。
綠色熒光染料(如 Calcein-AM)能夠自由穿透活細(xì)胞的細(xì)胞膜,并在細(xì)胞內(nèi)被酯酶轉(zhuǎn)化為具有熒光的 Calcein,從而發(fā)出明亮的綠色熒光。這一特性使得綠色熒光染料成為標(biāo)記活細(xì)胞的理想選擇?;罴?xì)胞的膜完整性良好,能夠有效地?cái)z取并保留綠色熒光染料,而死細(xì)胞由于細(xì)胞膜的破損,無法有效攝取或保留該染料。
紅色熒光染料(如 PI)則主要用于標(biāo)記死細(xì)胞。PI 是一種核酸染料,能夠與細(xì)胞內(nèi)的 DNA 結(jié)合并發(fā)出紅色熒光。在活細(xì)胞中,細(xì)胞膜的完整性阻止 PI 進(jìn)入細(xì)胞內(nèi);而在死細(xì)胞中,細(xì)胞膜的破損使得 PI 能夠自由進(jìn)入并與 DNA 結(jié)合,從而發(fā)出紅色熒光。
細(xì)胞培養(yǎng):根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求,將細(xì)胞培養(yǎng)至適宜的密度。對(duì)于貼壁細(xì)胞,可使用胰蛋白酶消化并收集細(xì)胞;對(duì)于懸浮細(xì)胞,直接收集即可。用PBS 洗滌細(xì)胞兩次,去除培養(yǎng)基和其他雜質(zhì)。
細(xì)胞計(jì)數(shù)與調(diào)整濃度:對(duì)收集到的細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù),并用適當(dāng)?shù)木彌_液調(diào)整細(xì)胞濃度,一般建議的細(xì)胞濃度范圍為
,以確保在后續(xù)的染色和檢測(cè)過程中能夠獲得理想的信號(hào)強(qiáng)度和細(xì)胞分布。
取適量細(xì)胞懸液:取適量的細(xì)胞懸液(通常為 100 μL),加入到新的離心管或培養(yǎng)皿中。
加入染色試劑:按照試劑盒說明書的要求,分別加入適量的綠色熒光染料和紅色熒光染料。一般情況下,每 100 μL 細(xì)胞懸液中需加入數(shù)微升的每種染料,具體用量應(yīng)根據(jù)試劑盒的推薦進(jìn)行調(diào)整。
輕輕混勻:輕輕吹打或漩渦混勻細(xì)胞懸液,確保染料均勻分布并充分接觸細(xì)胞。這一步驟對(duì)于保證染色的均勻性和準(zhǔn)確性至關(guān)重要。
避光孵育:將染色后的細(xì)胞懸液置于適當(dāng)?shù)臏囟龋ㄈ?37℃)下避光孵育一段時(shí)間,通常為 15 - 30 分鐘。避光孵育有助于防止染料的光漂白,確保熒光信號(hào)的穩(wěn)定和清晰。
去除未結(jié)合的染料:用預(yù)冷的 PBS 或其他適當(dāng)?shù)木彌_液洗滌細(xì)胞一次,以去除未結(jié)合的染料。離心速度為 300×g,離心時(shí)間為 5 分鐘。用適量的緩沖液重新懸浮細(xì)胞,以減少背景熒光并提高檢測(cè)的準(zhǔn)確性。
分析檢測(cè):將染色后的細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移到流式細(xì)胞儀檢測(cè)管或熒光顯微鏡載玻片上,立即進(jìn)行檢測(cè)。在流式細(xì)胞儀中,綠色熒光的激發(fā)波長(zhǎng)一般為 488 - 500 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為 510 - 530 nm;紅色熒光的激發(fā)波長(zhǎng)一般為 490 - 540 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為 600 - 630 nm。
活/死細(xì)胞雙染色試劑盒應(yīng)保存在 4℃左右的低溫環(huán)境中,避免光照直射和溫度波動(dòng)過大。在保存過程中,注意密封保存,防止試劑揮發(fā)或吸收水分。試劑盒在有效期內(nèi)具有良好的穩(wěn)定性,每一批次都經(jīng)過嚴(yán)格的質(zhì)量檢測(cè),確保其性能符合要求。
在實(shí)驗(yàn)過程中,需嚴(yán)格遵循無菌操作規(guī)范,避免細(xì)胞受到污染。使用的試劑、培養(yǎng)容器和操作工具都應(yīng)經(jīng)過嚴(yán)格的滅菌處理。實(shí)驗(yàn)操作應(yīng)在超凈工作臺(tái)中進(jìn)行,以降低污染風(fēng)險(xiǎn)。
染色時(shí)間應(yīng)根據(jù)細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn)需求進(jìn)行優(yōu)化。過短的染色時(shí)間可能導(dǎo)致染色不充分,影響檢測(cè)結(jié)果;過長(zhǎng)的染色時(shí)間則可能導(dǎo)致非特異性染色,增加背景信號(hào)。建議在正式實(shí)驗(yàn)前進(jìn)行小規(guī)模的預(yù)實(shí)驗(yàn),以確定最佳的染色條件。
這兩種熒光染料對(duì)光敏感,操作過程中應(yīng)盡量減少樣本的光照時(shí)間,以防止熒光淬滅。在染色和檢測(cè)過程中,應(yīng)使用適當(dāng)?shù)谋芄獯胧缡褂帽芄庹只蛟诎凳抑胁僮?。?xì)胞狀態(tài)監(jiān)測(cè):實(shí)驗(yàn)全程觀察細(xì)胞狀態(tài),確保良好生理狀態(tài),異常時(shí)及時(shí)調(diào)整條件。
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