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基因敲除株的制備過程

閱讀:149      發(fā)布時(shí)間:2025-3-26
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基因敲除株的制備方法有多種,下面以 CRISPR - Cas9 技術(shù)為例,介紹基因敲除株的一般制備過程:

設(shè)計(jì) gRNA

  • 確定靶位點(diǎn):根據(jù)要敲除的基因序列,選擇合適的靶位點(diǎn)。一般選擇基因的編碼區(qū),尤其是起始密碼子附近或功能結(jié)構(gòu)域所在區(qū)域,以確保敲除后能有效破壞基因功能。

  • 設(shè)計(jì) gRNA 序列:針對選定的靶位點(diǎn),設(shè)計(jì)特異性的 gRNA 序列。gRNA 通常長度為 20 個(gè)左右的核苷酸,需與靶 DNA 序列精確互補(bǔ)配對,同時(shí)要避免與基因組中其他非靶區(qū)域有高度同源性,以減少脫靶效應(yīng)。

構(gòu)建表達(dá)載體

  • 選擇載體:挑選適合的表達(dá)載體,如常用的質(zhì)粒載體。載體應(yīng)包含能在宿主細(xì)胞中啟動 gRNA 和 Cas9 蛋白表達(dá)的啟動子,以及篩選標(biāo)記基因,如抗生素抗性基因,以便后續(xù)篩選陽性克隆。

  • 插入 gRNA 和 Cas9 基因:將合成的 gRNA 序列和 Cas9 基因片段通過基因克隆技術(shù)插入到載體中,構(gòu)建成完整的 CRISPR - Cas9 表達(dá)載體。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染或轉(zhuǎn)化

  • 轉(zhuǎn)染 / 轉(zhuǎn)化方法選擇:根據(jù)宿主細(xì)胞類型選擇合適的方法將表達(dá)載體導(dǎo)入細(xì)胞。對于動物細(xì)胞,常用的方法有脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染、電穿孔法等;對于細(xì)菌或酵母細(xì)胞,可采用化學(xué)轉(zhuǎn)化、電轉(zhuǎn)化等方法。

  • 轉(zhuǎn)染 / 轉(zhuǎn)化操作:按照所選方法的操作規(guī)程進(jìn)行實(shí)驗(yàn),將 CRISPR - Cas9 表達(dá)載體導(dǎo)入細(xì)胞。在導(dǎo)入后,載體進(jìn)入細(xì)胞并在細(xì)胞內(nèi)表達(dá) gRNA 和 Cas9 蛋白,gRNA 引導(dǎo) Cas9 蛋白識別并結(jié)合到靶基因位點(diǎn)。

篩選陽性克隆

  • 初步篩選:利用載體上的篩選標(biāo)記基因進(jìn)行初步篩選。例如,使用含有相應(yīng)抗生素的培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)胞,只有成功導(dǎo)入表達(dá)載體并表達(dá)出抗性蛋白的細(xì)胞才能存活,從而得到初步篩選的陽性細(xì)胞克隆。

  • 鑒定陽性克隆:通過 PCR 擴(kuò)增靶基因區(qū)域,然后進(jìn)行測序分析,確定是否在靶位點(diǎn)發(fā)生了基因編輯。只有在靶位點(diǎn)出現(xiàn)堿基缺失、插入或替換等突變,導(dǎo)致基因功能喪失的克隆,才是真正的基因敲除陽性克隆。



  • 基因敲除株的制備過程

單克隆培養(yǎng)與鑒定

  • 單克隆分離:采用有限稀釋法或軟瓊脂平板法等,將篩選出的陽性細(xì)胞克隆進(jìn)行單細(xì)胞分離培養(yǎng),得到單個(gè)細(xì)胞衍生的克隆群體,確保每個(gè)克隆均來自單個(gè)基因敲除細(xì)胞。

  • 進(jìn)一步鑒定:對單克隆細(xì)胞進(jìn)行再次鑒定,除了通過測序驗(yàn)證基因敲除情況外,還可采用 Western blot、免疫熒光等方法檢測基因敲除后蛋白表達(dá)水平的變化,以確認(rèn)基因敲除的效果。

動物模型制備(如需要)

  • 胚胎注射:如果要制備基因敲除動物模型,如小鼠,可將 CRISPR - Cas9 系統(tǒng)注射到受精卵中。通過顯微操作技術(shù),將含有 gRNA 和 Cas9 蛋白或 mRNA 的溶液注射到受精卵的原核或細(xì)胞質(zhì)中,然后將注射后的受精卵移植到代孕母鼠的輸卵管中,讓其發(fā)育成胚胎。

  • 基因敲除動物鑒定:待幼鼠出生后,通過提取鼠尾基因組 DNA,采用 PCR 和測序等方法鑒定基因敲除情況,篩選出基因敲除陽性的動物個(gè)體,即得到基因敲除株動物模型。


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