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恒远展示WB实验具体操作步骤赏析
阅读：2171 发布时间：2015-4-20Western Blot技术服务Western Blot。它是分子生物学、生物化学和免疫遗传学中常用的一种实验方法。其基本原理是通过特异性抗体对凝胶电泳处理过的细胞或生物组织样品进行着色。通过分析着色的位置和着色深度获得特定蛋白质在所分析的细胞或组织中的表达情况的信息。我司本周展示WB实验具体操作步骤?；队劢股臀?，您可将您的建议或意见告知我们，真诚为您服务，上海恒远生物欢迎您的光临。
因上海恒远WB实验为代测服务。我司服务流程如下：
1.客户提供一抗，是进口的抗体，本公司可代购
2.提取样本总蛋白，进行总蛋白定量
3.根据总蛋白定量的结果，微调各个样本间浓度差异，高温变性，加入loading buffer，上样跑胶，以及转膜显色等步骤
4.利用软件对所得胶片进行扫描，用相对定量方法进行定量分析时，要对管家蛋白等参比蛋白进行同样操作，用所得到的值进行蛋白量的校正，zui后求得目的蛋白的相对表达量
5.提供实验报告：包括详细的实验方法及western blot结果的相关图表 。以下为我司具体做实验的操作步骤，欢迎点击阅读：
【操作步骤】
1）按厂商的使用指南用两块干净的玻璃，平板和0.75mm垫片组装电泳装置中的玻璃平板夹层，并固定在灌胶支架上。
2）按表1配制分离胶液体并脱气，然后加入10％的过硫酸铵和TEMED，轻轻搅拌混匀。
表1 聚丙烯酰胺分离胶的配制
试剂成分配制不同浓度分离胶所需试剂（ml）
5%8%10%12%15%
Acry:Bis （30:0.8）2.504.005.006.007.50
4×Tris?Cl/SDS, pH8.83.753.753.753.75
H2O8.757.256.255.253.25
10%过硫酸铵0.050.050.050.050.05
TEMED0.010.010.010.010.01
按所需分离的蛋白质分子大小选择合适的丙烯酰胺百分比浓度，一般地，5％的凝胶可用于60～200kDa的SDS变性蛋白质分子的分离，10％用于16～70kDa，15％用于12～45kDa。
3）用一根巴斯德吸管立即将分离胶液体沿夹层中一条垫片的边缘加入于玻璃平板夹层中，至凝胶约5cm高为止。样品体积少于10μl不需灌制积层胶。
4）用另一根已斯德吸管，先从一边的垫片，再从另一边垫片往夹层的液面顶部缓缓加入一层水饱和异丁醇（厚约1cm）。让凝胶在室温聚合30min。
聚合后，可见在顶层异丁醇与凝胶的界面间有一清晰的折光线，胶的聚合失败往往问题在于过硫酸按或TEMED，或两者都有。
5）倾去顶层的异丁醇，并以1×Tris-Cl/SDS, pH8.8缓冲液冲洗凝胶的顶部表面,尽量用吸水纸吸干。
6）按表2配制积层胶液体，用吸管将液体沿一条垫片加入到玻璃平板夹层，直至夹层的顶部。
表2 聚丙烯酰胺积层胶的配制
GEL%（3.9%） Total （10.05ml）
Acry:Bis（30:0.8） 1.30 ml
4×Tris?Cl/SDS, pH6.8 2.50 ml
H2O 6.10 ml
10%过硫酸铵 0.05 ml
TEMED 0.01 ml
7）将0.75mm厚的梳子插入夹层的积层胶液体中，必要时，再补加积层胶液体充盈剩余空间。让积层胶室温聚合30min。
8）在具螺口盖的微量离心管中，用2×SDS加样缓冲液按1:1（v/v）稀释待测蛋白质样品，于100℃煮沸5-10min。如样品是蛋白质沉淀物，加入50～100μl 1×SDS加样缓冲液溶解之，并同样在100℃煮沸5-10min。按供应商的使用指南用2×SDS加样缓冲液溶解蛋白质分子量标准混合物。
对于0.3cm宽的加样孔，推荐加样体积以不超过20μl 为宜。用考马斯亮蓝染色法显迹，成分很复杂的蛋白质混合物需加25～50μg，而样品中只有一种或不多的几种蛋白的话，只需1～10μg蛋白量。采用银染显迹时，样品用量可减小10～100倍（按样品的复杂程度在小于20μl的体积溶有0.01～0.5ng蛋白样品不等）。
2×SDS加样缓冲液（loading buffer）配制：
成分 体积 （ml）
0.5M Tris?Cl （pH6.8） 12.5
20%SDS 11.5
Glycerin 10
2% Blue-Bromo-phenol 2.5
β-mercaptoethanol * 5.0
加H2O至总体积50 ml，分装
*β-mercaptoethanol 在临用前加入。
9）小心拔出梳子，避免撕裂聚丙烯酰胺凝胶加样孔。取出梳子后，以1×SDS电泳电泳缓冲液冲洗加祥孔，并以此缓冲液充满之。
10）按厂商指南将凝胶板固定到电泳装置的上缓冲液室（上槽），同时往下缓冲液室（下槽）加入推荐量的1×SDS电泳缓冲液。
11）将固定于上槽的凝胶板放入下槽中，并往上槽加入部分电泳缓冲液至刚好淹没凝胶的加样孔。
12）用带平嘴针头的50μl注射器将同样浓度的蛋白质样品等体积加入到样品孔中，小心加样使样品在孔的底部成一薄层，对照孔加入蛋白质分子量标准样品，如有空置的加样孔，须加等体积的空白1×SDS样品缓冲液，以防相邻泳道样品的扩散。
13）再往上槽加入余下的1×SDS电泳缓冲液。此操作缓慢小心，以防冲起样品孔中的样品。
14）连接电源，对于0.75mm厚的垂直板电泳，先在60V下电泳至溴酚蓝染料从积层胶进入分离胶，再将电压调至120V继续电泳至溴酚蓝到达凝胶底部为止。
15）关闭电源并撤去连接的导线，弃去电泳缓冲液。连同上槽一起将凝胶夹层取出。
16）将凝胶定位以便识别加样的顺序，将凝胶板从上槽解离出来，放在一叠吸水纸或纸巾上。
17）小心将封边的垫片抽出一半，并以此为杠杆橇起上面的玻璃平板，使凝胶暴露出来。
18）小心从下面的玻璃平板上移出凝胶，在凝胶的一角切去一小块以便在染色及干胶后仍能认出加样次序，接着就可进行蛋白质的检测。
19）转膜：将凝胶面与负极相连，硝酸纤维素膜与正极相连。（100V，1小时）要放于4℃。
20）清洗：将硝酸纤维素膜放入1X TBST中清洗3次，每次5分钟。摇床摇动。
21）封闭
22）一抗孵育：一抗用TBST1:1000稀释，将硝酸纤维素膜放入其中，37℃孵育1.5小时，（或4℃过一夜）摇床摇动。
23）清洗：将硝酸纤维素膜放入1X TBST中清洗3次，每次5分钟。
24）二抗孵育：二抗用TBST1:8000稀释，将硝酸纤维素膜放入其中，37℃孵育1小时，摇床摇动。
25）清洗：同22，之后，用1X TBS在清洗2次，每次5分钟，以洗去膜上的Tween 20，因为它可以阻碍底物的沉积。
26）显色
按如下配方配制显色液：
1mL水+1滴（大约50微升）试剂A（之后混匀）+1滴试剂B+1滴试剂C
将硝酸纤维素膜放入其中孵育，一旦显色，立即放入去离子水中终止反应。