NADP 磷酸酶（NADPase）试剂盒说明书

微量法 100 管/96 样

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义：

NADPase 主要存在于植物组织中，是生物体内wei一催化 NADP+降解为NAD+的酶，与 NADK 一起调控NAD 和NADP 之间的平衡。

测定原理：

NADPase 能够催化NADP+水解为NAD+和无机磷的反应，通过测定无机磷的量来测定NADPase 活性。

NADP 磷酸酶（NADPase）试剂盒 辅酶Ⅱ系列

组成：

试剂二：粉剂×4 支，-20℃保存；用时加入 1 ml 试剂一充分溶解备用，现配现用。试剂三：粉剂×1 瓶, 4℃保存。用时加入 25ml 蒸馏水，溶解后 4℃可保存一周。 试剂四：粉剂×1 瓶, 4℃保存。用时加入 25ml 蒸馏水，溶解后 4℃可保存一周。 试剂六：10mmol/L 标准磷贮备液 10ml×1 瓶，4℃保存。

0.5μmol/ml 标准磷应用液配制：将试剂六 20 倍稀释，即取 0.5ml 试剂六加 9.5 蒸馏水，充分混匀。

定磷试剂的配制：按 H2O: 试剂三:试剂四:试剂五=2:1:1:1 的比例配制，配好的定磷试剂应为浅黄色，若无色则试剂失效，若是蓝色则为磷污染，定磷剂现用现配。

注意：配试剂最好用新的烧杯、玻棒和玻璃移液器，也可以用一次性塑料器皿，避免磷污染。

具体产品的参数以收到产品说明书的参数为准

自备仪器和用品：

可见分光光度计/酶标仪、恒温水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研钵、冰和蒸馏水

样本的前处理：

按照组织质量（g）：提取液体积(ml)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1ml 提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。

测定步骤：

1、分光光度计或酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 660nm，蒸馏水调零。

2、酶促反应（在 EP 管中加入下列试剂）

37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）预热 5min

37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）准确反应 30min 后，95℃水浴 5min（盖紧，以防止水分散失），冷却后，10000g 25℃离心 5min，取上清

3、定磷（在EP 管或 96 孔板中加入下列试剂）

混匀，25℃室温放置 30min，在 660nm 处，记录各管吸光值。

注意事项：

1、此法具有微量、灵敏、快速的特点。所以对测定所用试管要求严格，要没有一点磷，若试管放过磷酸 或磷酸盐缓冲液，一定要洗得非常干净，要先用洗洁精加水煮，再用自来水冲，最后用蒸馏水冲干净。最好用一次性塑料管或新玻璃管，避免磷污染是检测成败的关键。

2、标准管、空白管和对照管只要做一次即可。

NADPase 酶活性计算：

1、按组织蛋白浓度计算：

定义：每小时每毫克组织蛋白NADPase 分解NADP 产生 1μmol 无机磷的量为一个 NADPase 活力单位。

NADPase (μmol/h/mg prot)=(C 标准管×V 总)×(A 测定管-A 对照管)÷(A 标准管-A 空白管)÷ (V 样×Cpr)÷T=5×(A 测定管-A 对照管)÷(A 标准管-A 空白管)÷Cpr

2、按样本鲜重计算：

定义：每小时每g 组织NADPase 分解NADP 产生 1μmol 无机磷的量为一个 NADPase 活力单位。

NADPase (μmol/h /g 鲜重)=(C 标准管×V 总)×(A 测定管-A 对照管)÷(A 标准管-A 空白管）×V 总÷(W× V 样

÷V 样总)÷T=5×(A 测定管-A 对照管)÷(A 标准管-A 空白管)÷W

C 标准管：标准管浓度，0.5μmol/ml；V 总：酶促反应总体积，0.2ml；V 样：加入样本体积，0.04ml ；V样总：加入提取液体积，1ml；T：反应时间，0.5 小时；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/ml；W：样本鲜重，g。

NADP 磷酸酶（NADPase）试剂盒 辅酶Ⅱ系列